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[转帖]新型全自动血液分析仪Sysmex XT-2000i 评估报告

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郑振寰 发表于 2005-3-28 20:26 | 显示全部楼层 |阅读模式

Wim van der M EER, Jacqueline MB D INNISSEN Marinus H de K EIJZER

Department of Clinical chemistry, University Medical Centre St Radboud,PO BOX9101,6500 HB Nijmegen, The Netherlands

经过三个月的评估后,SysmHGBex新近推出了XT-2000i 全自动血液分析仪,血红蛋白(HGB)浓度测量使用十二烷基硫酸钠(SLS)的原理,红细胞(RBCRBC-I)和血小板(PLTPLT-I)计数运用电阻抗技术,白细胞(WBC)、网织红细胞(RET)、血小板(PLT-O,即光学检测PLT)、红细胞(RBC-O,即光学检测RBC)运用荧光染料聚次甲基染色,通过流式细胞的原理进行计数。

试验分析了它的重复性、交叉污染和线形。相关性试验包括样本的报警和SysmexXE-2100进行比较。同时根据美国国家临床实验室标准化委员会(NCCLS)推荐,仪器的报警数据也与显微镜的分类结果进行核实。

XE-2100进行比较,除了网织红细胞外,它的全血细胞计数(CBC)和全自动细胞分类相关系数良好。多种报警信号的敏感性、特异性、准确性和显微镜的分类比较相符合。

关键词:XT-2000i 全自动血液分析仪,全血细胞计数,血小板

介绍

全自动血液分析仪处理包括自动白细胞分类在内的血细胞计数的能力越来越高。仪器的制造商均致力于开发新技术或者改进现有的方法。

Sysmex XT-2000i是在XE-2100的技术基础上改进后的新型血液分析仪,Sysmex XT-2000i具有有核红细胞(NRBC)计数功能和IMI通道。血红蛋白(HGB)测量使用了十二烷基硫酸钠(SLS)的原理。白细胞计数应用了多角度光散射的原理,综合分析光散射信号和聚次甲基荧光染料信号进行白细胞分类。血小板(PLT-I)和红细胞(RBC-I)常规运用电阻抗技术,但是它们也可以在网织红细胞分析模式中运用激光法的原理(光散射信号和聚次甲基荧光染料信号;RBC-O PLT-O)进行计数。网织红细胞计数是通过测定反映聚次甲基荧光染料染色的DNA/RNA组份的侧向荧光信号进行计数。

该血液分析仪每小时可测定80个标本,在封闭样本模式下需要150微升血样,在开放样本模式下需要85微升血样,在毛细血管预稀释模式下需要40微升血样。血液分析仪可以进行下列项目的选择:全血细胞计数(CBC)、CBC+分类、CBC+网织红细胞计数、CBC+分类+网织红细胞计数。

CBC、自动白细胞分类和网织红细胞计数,这些数据的相关性和SysmexXE-2100进行比较。白细胞分类的仪器报警和显微镜进行比较。

材料和方法

评估的XT-2000i 样机最初由制造商进行检查和调整。在评估期间,质控操作与XE-2100一样每天进行。用于评估试验的所有样本都用EDTA-K3抗凝,同时在两台仪器上操作。

重复性试验是在手工模式下对同一样本进行连续十次测定。分析下列几种样本:

(a) 低值WBCRBCPLTRET

(b) 中值WBCRBCPLTRET

(c) 高值WBCRBCPLTRET

线性实验是将一个高值的血样本用自身的血浆稀释一系列比例(100%80%60%40%20%10%5%),使其浓度达到下列范围:

RBC 0.38 – 8.27×1012/L

WBC 9.2 – 21.2×109/L 0.75 – 8.72×109/L

PLT 62 - 1287×109/L19 – 102×109/L

RET 16 - 200×109/L

交叉污染率实验是根据国际血液学标准化委员会(ICSH)推荐的方法用三个低值和高值的WBCRBCPLT浓度的样本。每个样本的互染率由下列公式计算得出:

l1-l3

互染率(%= ×100

h3-l3

用低值样本做三次(l1,l2,l3),用高值样本做三次(h1,h2,h3)。

100份正常的标本和100份异常的标本,例如含有幼稚的白细胞和原始细胞进行两台仪器的比较,仪器报告白细胞五分类的结果。数据分析运用t检验Passing-BablokBland-Altman分析法中的t检验和r检验。

100份正常的样本和100份异常的样本的报警信号与报警信号与显微镜方法进行比较(两名技师各对上述200例进行细胞计数分类,共400例计数分类)

所有样本操作包括血液涂片的检查必须在6小时内处理完成。涂片用May-Grünwald Giemsa 染色。根据NCCLS H20-A推荐的方法,显微镜对400例血细胞进行分类,由下列公式计算出报警的敏感性、特异性和准确性:

真阳性

敏感性= ×100

真阳性+假阴性

真阴性

特异性= ×100

真阴性+假阳性

真阴性+真阴性

准确性性= ×100

真阴性+真阳性+假阴性+假阳性

对杆状核细胞,在此实验中我们采用了荷兰血液学实验室的标准,它最早由Lee等人提出:中性粒细胞核最窄处占最宽处的1/21/3。正常人血中的杆状核细胞的参考值小于7%,大于6%的杆状核细胞或大于1%的异常细胞或者其它幼稚细胞(IG)认为核左移报警阳性。

结论

重复性

WBCRBCPLT-IPLT-ORET所有项目的CV实验证实良好(表1)。

互染率

WBC0.12%RBC0%PLT-I0%PLT-O0.75%

XE-2100XT-2000i的比较

100份正常标本的样本和100份异常的样本的报警值比较,结果见表2。此处两者分析结果的Bland-Altman散点图见图1

1XT-2000i 重复性

Parameter

Unit

Mean

SD

CV%

WBC

109/L

1.78

0.03

1.9

WBC

109/L

6.29

0.09

1.44

WBC

109/L

17.14

0.36

2.1

RBC

1012/L

2.44

0.01

0.29

RBC

1012/L

3.78

0.03

0.75

RBC

1012/L

5.84

0.03

0.57

PLT-I

109/L

19.4

0.7

3.64

PLT-I

109/L

164.6

5.66

3.44

PLT-I

109/L

1109.7

14.83

1.34

PLT-O

109/L

21.2

0.83

3.9

PLT-O

109/L

189.2

5.66

2.99

PLT-O

109/L

1247.9

20.51

1.64

RET

%

0.16

0.08

53.03

RET

%

1.01

0.01

0.3

RET

%

3.97

0.16

3.92

2XE-2100XT-2000i CBCRETWBC分类比较

Parameter

Unit

截距

斜率

相关系数

WBC

X109/L

-0.0216

0.983

0.998

PLT-r*

X109/L

-4.38

1.020

0.992

PLT-I

X109/L

-1.79

1.013

0.992

PLT-O

X109/L

1.36

0.888

0.996

RBC

X1012/L

-0.1515

1.035

0.998

HGB

mmol/L

-0.100

1.000

0.998

HCT

L/L

-0.0022

0.979

0.995

MCV

fL

-2.400

1.000

0.991

MCH

fmol/L

0.0102

1.015

0.987

MCHC

mmol/L

0.0400

1.000

0.914

RET

X109/L

-0.0014

1.315

0.976

RET-LFR

%

-17.047

1.176

0.899

RET-MFR

%

-0.859

1.206

0.846

RET-HFR

%

0.00

1.016

0.829

NEUT

X109/L

5.19

0.994

0.998

LYMPH

X109/L

0.62

0.962

0.995

MONO

X109/L

-0.99

0.776

0.957

EO

X109/L

0.000

1.000

0.855

BASO

X109/L

0.000

1.000

0.855

PLT-r是报告的计数值,意思是一台仪器测定一个标本的值,可以是电阻法的值也可以是激光法的值。

1 XE-2100XT-2000i多个项目比较的Bland-Altman散点图

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 楼主| 郑振寰 发表于 2005-3-28 20:29 | 显示全部楼层

线性

XT-2000i所有样本的线性数据显示良好的相关性,见表3

XE-2100XT-2000i异常值报警能力的比较

在表4中列出了两种血液分析仪对于报警信号的比较。XT-2000i的定量报警值由制造商设定,而XE-2100有评估实验室自行设定。

XT报警数据的特异性和敏感性

在表5中列出了400例细胞分类与显微镜比较结果

Parameter

unit

线性范围

r 2

Open mode

 

 

 

RBC-I

x1012/L

8.27-0.38

0.9987

RBC-O

x1012/L

8.12-0.37

0.9995

HGB

mmol/L

15-0.7

0.9995

PLT-I

x109/L

1,287-62

0.9954

PLT-I

x109/L

102-19

0.9929

PLT-O

x109/L

1,669-82

0.9954

PLT-O

x109/L

101-13

0.9822

WBC

x109/L

219.2-9.2

0.9993

WBC

x109/L

8.72-0.75

0.9986

RET

x109/L

200-15.8

0.9552

Capillary mode

 

 

RBC-I

x1012/L

6.94-0.36

0.9937

RBC-O

x1012/L

6.86-0.35

0.9931

HGB

mmol/L

12.8-0.7

0.9939

PLT-I

x109/L

1,287-62

0.9946

PLT-I

x109/L

101-13

0.9822

PLT-O

x109/L

1,870-89

0.9975

PLT-O

x109/L

87-13

0.9591

WBC

x109/L

244.1-12.1

0.9948

WBC

x109/L

7.76-0.82

0.996

RET

x109/L

170.7-20.4

0.9485

AL/ALB*1

XE

XE

Blasts

XE

XE

IG*2

XE

XE

-

+

-

+

-

+

XT-

207

4

XT-

208

6

XT-

151

3

XT+

9

1

XT+

8

8

XT+

3

43

LS *3

XE

XE

NRBC *4

XE

XE

PC *5

XE

XE

-

+

-

+

-

+

XT-

205

1

XT-

195

5

XT-

196

9

XT+

5

11

XT+

17

13

XT+

7

18

*1.AL/ALB=异淋?或者异常淋巴细胞?/原始细胞

XE-2100XT-2000i 定量报警值=160

*2.IG=幼稚粒细胞?XE-2100XT-2000i定量报警值=160

*3.LS=核左移?XE-2100XT-2000i定量报警值=160

*4.NRBC=有核红细胞?从出现有核红细胞报警为阳性;XE-2100以有核红细胞计数>0.5%为阳性。

*5.PC=血小板凝集?

报警

特异性 (%)

敏感性 (%)

准确性 (%)

异常淋巴细胞?/原始细胞?异淋?

71

92

89.9

原始细胞?

96.6

100

96

幼稚粒细胞?

79.7

100

81.3

核左移?

95.6

70.4

92.6

有核红细胞?

92.5

81.3

91.7

异常红细胞形态 *

98.1

53.3*

95.2

血小板聚集?

90.3

66.7

95.2

*仪器不能识别的红细胞,镜下所见的球形红细胞、椭圆形红细胞、裂片红细胞、靶形红细胞、嗜碱性红细胞。

本实验是针对Sysmex XT-2000i 的性能评估。我们选取常规血液学实验室有代表性的血液标本,测定其开放模式和预稀释模式的线性、重复性和互染率。所有的特性均完美而令人满意。

此外进行XT-2000iSysmex XE-2100的多个项目比较,统计分析显示除了RET计数和光学血小板(PLT-O)计数有差异外,其他项目相关性非常好。这两个参数在仪器的同一个通道内测定,有趣的是差异随着浓度的增加线性增加,提示这些差异的产生归因于异常的校正。总的来说,两种分析仪对于报警值表现出一致性。

XT-2000iXE-2100报警能力相似。

XT-2000i 在各种实验室中都将是非常有用的血液分析仪。

致谢

Sysmex 欧洲公司和GoffinIn给我们这次评估机会。

参考书目:

1) Briggs C, et al.: Performance evaluation of the Sysmex XE-2100automated haematology analyser. Sysmex J Int, 9: 113-119,1999.

2) International Council for Standardization in Haematology (ICSH):Guidelines for evaluation of automated blood cell analyser includ-ing those used differential leukocytes and reticulocyte countingand cell marker applications. Clin Lab Haematol, 16: 157-174,1994.

3) Passing H, Bablok W: A new biometrical procedure for testing theequality of measurements from two different analytical methods.Clin Chem Clin Biochem, 21: 709-720, 1983.

4) Bland JM, Altman DG: Comparing methods of measurement: whyplotting difference against standard method is misleading. Lancet,346: 1085-1087, 1995.

5) National Committee for Clinical Laboratory Standards (NCCLS):Reference leukocyte differential count (proportional) and evalua-tion of instrumental methods; Approved Standard NCCLS docu-ment H20-A, Villanova, PA.

6) Lee GR, Foerster J, Lukens J, et al.: Wintrobe's clinical hematol-ogy. Ed 10. Baltimore, Williams & Wilkins, 1999

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